À propos de Camélia
Les camélias sont l'une des plantes ornementales ligneuses les plus populaires. Ils sont également connus comme les reines des fleurs d'hiver. Ils sont attrayants, arbustes à feuilles persistantes qui sont largement cultivés pour leurs belles fleurs et leur magnifique feuillage persistant.
Le camélia est un genre de plantes à fleurs appartenant à la famille des Théacées. Ils se composent d'une gamme de 100-300 espèces tropicales et subtropicales, appartenant principalement aux régions d'Asie orientale et méridionale, de l'Himalaya à l'est jusqu'au Japon et en Indonésie.
Les camélias atteignent une hauteur de 20 mètres et ont des feuilles disposées en alternance, Facile, épais, cranté, et brillant. Leurs fleurs sont grandes et remarquables avec cinq à neuf pétales dans leurs espèces naturelles. Ils apparaissent généralement à la fin de l'hiver, mais certaines variétés fleurissent à la fin de l'automne ou au milieu du printemps.
Ces plantes ont plusieurs usages économiques comme les feuilles C. sinensis sont des thés populaires utilisés dans les régions d'Asie de l'Est, Asie du sud est, et les sous-continents indiens; C. japonica, C. sasanqua , et leurs hybrides sont des plantes ornementales utilisées comme cultivars de jardin; et C. oleifera produit de l'huile de graines de thé qui est utilisée en cuisine et en cosmétique.
À propos de l'entretien des plantes, ils préfèrent humide, sol bien drainé, ayant un pH de 6,5 ; ils doivent être régulièrement arrosés pendant quelques années pour les garder humides, mais ne les déborde pas, et souvent l'élagage est nécessaire pour éliminer les branches croisées ou le bois malade/mort.
Culture tissulaire de camélia
Les techniques conventionnelles pour cultiver le camélia sont la coupe, greffage, ou en utilisant des graines. Mais, ces techniques sont laborieuses et inefficaces pour une utilisation à l'échelle commerciale. Et, la culture tissulaire est la meilleure alternative. Sur la base de l'objectif, la propagation in vitro des plantes est classée en deux groupes :
- En utilisant des pointes de pousse, conseils de tournage, et les bourgeons axillaires comme explants utiles pour la propagation clonale rapide, production de plantes indemnes de virus, et la préservation des ressources génétiques.
- En utilisant des embryons ou des bourgeons adventifs formés en culture de cals ou directement à partir de tissus somatiques qui ont des applications dans la propagation de masse rapide ou dans les programmes de sélection où les embryons zygotiques, obtenu à partir de croisements incompatibles, sont cultivés.
La procédure de la culture tissulaire
Voici une procédure de culture tissulaire de C. sasanqua à l'aide d'explants nodaux, qui est tiré du Torres K.C. (1989) Micropropagation du Camélia. Dans :Techniques de culture tissulaire pour les cultures horticoles. Springer, Boston, MA. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-9756-8_10.
Matériaux nécessaires
Bécher de 2000 ml et bécher de 250 ml, boîtes de Pétri stériles en plastique ou en verre, bec Bunsen, forceps, scalpels, tubes de culture, 20% de solution de Clorox, Entre 20, eau distillée stérile, 95% d'éthanol, solution IBA, médias MS, du sucre, gélose, thiamine, Myo-inositol, BA, ANA, GA3, tourbe, et vermiculite.
Mise en place des tournages
- Préparer un milieu d'initiation de pousse contenant de la thiamine (1,0 mg/litre), Myo-inositol (100,0 mg/litre), et BA (1,0 mg/litre).
- Distribuer les milieux dans des tubes de culture et stériliser à 121 degrés Celsius pendant 15 minutes.
- Recueillir des explants nodaux de plantes indemnes de maladie et stériliser pendant 1 min dans de l'éthanol à 95 %, puis pendant 10 min dans une solution de Clorox à 20 %.
- Après ça, rincer les explants trois fois avec de l'eau distillée stérile.
- Inoculer chaque explant dans les tubes de culture pendant 3 semaines à 25°C dans l'obscurité totale. Après 3 semaines, déplacer les cultures dans des conditions de faible luminosité à 25°C pour le reste de la période d'établissement de 12 semaines.
Multiplication de pousses
- Préparer le milieu de multiplication des pousses additionné de thiamine (1,0 mg/litre), Myo-inositol (100,0 mg/litre), BA (2,0 mg/litre), AAN (0,1 mg/litre), et GA3 (5,0 mg/litre).
- Distribuer 10 ml/tube de milieu dans des tubes de culture et stériliser.
- Recueillir les pousses établies, 10 mm de longueur, et transférer un explant dans chaque tube. Puis, incuber les cultures à 25°C dans des conditions de faible luminosité.
- Après 8 semaines, transférer les explants dans un tube contenant du milieu frais.
Enracinement des pousses régénérées
- Préparer un milieu racinaire contenant de la thiamine (1,0 mg/litre) et du myo-inositol (100,0 mg/litre) et ajuster le pH à 5,0.
- Distribuer 10 ml de milieu dans chaque tube de culture et stériliser.
- Préparer 100 ml d'une solution IBA à 0,5 g/litre et la stériliser par filtration.
- Récupérez les pousses de l'étape de multiplication, en 20 mm ou plus de longueur, et tremper les 7,5 mm de micro-découpe dans la solution IBA pendant 30 minutes.
- Transférer les microcoupures dans chaque tube de culture et les incuber à 20°C dans des conditions de faible luminosité pendant 8 semaines.
- Après la formation d'une masse racinaire sur une bouture, placer la culture dans des conditions d'éclaircissement élevé en conditions de croissance, avec la fermeture du tube retirée, pour le durcissement.
- Après 2 semaines dans l'environnement de durcissement, transférer les boutures dans des pots de tourbe de 5 cm2 contenant le mélange de terre avec 3 parties d'écorce, 1 partie de tourbe, et 1 partie de vermiculite en volume et placez les pots sous un brouillard intermittent.
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