Une étape critique dans le cycle d'élevage de crevettes est la sélection de post-larves (PL) de bonne qualité et leur stockage ultérieur dans des étangs. Ne pas parvenir à une bonne survie post-stockage de vos post-larves peut réduire votre potentiel de récolte dès le début de la culture, réduisant ainsi la rentabilité. Si la survie post-stockage est faible, on peut être obligé de décider s'il faut repeupler (si des post-larves supplémentaires sont effectivement disponibles) ou continuer avec un repeuplement sous-optimal. La décision est rendue plus difficile par le fait qu'à cette époque de l'année, la saison de croissance est généralement bien avancée, et, comme de nombreux agriculteurs l'ont découvert par expérience amère, un temps de grossissement plus court résultant de l'empoissonnement tardif se traduit généralement par des crevettes plus petites à la récolte. La première étape vers l'optimisation du succès de stockage est la sélection de post-larves de haute qualité.
Instructions clés pour la sélection et le stockage des semences
- Évitez les graines sauvages et les graines provenant de pépinières commerciales mal gérées. Il a de fortes chances d'importer des maladies. Stockez le même lot de graines. Éviter différents lots de semences de différents lots de semences provenant de différentes écloseries. Stockez les graines de crevettes une seule fois par culture. Ne stockez pas continuellement de nouveaux lots de semences.
- Sélectionnez une bonne écloserie enregistrée pour obtenir des post-larves spécifiques exemptes d'agents pathogènes (SPF). Les couvoirs devraient être conçus (ou modifiés, dans le cas des couvoirs existants) pour assurer une bonne biosécurité. Une écloserie de crevettes bien conçue se compose d'installations séparées pour la quarantaine, frai de maturation, éclosion, et élevage larvaire et PL, culture d'algues d'intérieur et d'extérieur, éclosion d'Artemia et préparation des aliments. Les couvoirs devraient avoir un système de biosécurité pour empêcher l'introduction de maladies.
La ponte d'une seule couveuse doit être suivie. Où un seul animal est gardé dans un bassin de frai pour le frai. Cela aide à réduire la contamination par les maladies. Les couvoirs devraient tenir des registres de gestion.
Les agriculteurs doivent vérifier les dossiers de dépistage précédents des crevettes gravides pour le MBV et le WSSV. Les couvoirs ne devraient pas utiliser de produits chimiques/antibiotiques interdits. Chaque couvoir doit avoir son propre ensemble de procédures opérationnelles normalisées. L'écloserie doit permettre l'accès aux représentants des agriculteurs à tout moment pour observer les réservoirs. L'écloserie doit fournir une facture/un certificat approprié pour l'achat de semences. L'agriculteur doit avoir le choix de rejeter les semences (si elles sont de mauvaise qualité) jusqu'au moment de l'emballage.
- Testez la gravide pour la maladie. Les couveuses individuelles doivent être transportées dans des sacs de transport spéciaux pour géniteurs remplis d'oxygène, scellé et placé sur de la glace dans des boîtes en mousse isolées pour maintenir la température de et <290C. Les éleveurs doivent s'assurer de la même chose lors de la visite à l'écloserie. Le stock de géniteurs doit être dépisté pour MBV avant de garder l'animal pour le frai.
Le stock de géniteurs doit être dépisté après la ponte pour le WSSV en collectant les pléopodes ainsi que l'écume dans des ampoules jetables pour les tests PCR dans les laboratoires qui ont terminé avec succès le ring test ( Obtenez au moins la liste des laboratoires PCR réussis de NaCSA/MPEDA).
Seuls les œufs/Nauplii testés négatifs pour le WSSV et le MBV, doit être utilisé pour la production ultérieure de PL. Les positifs doivent être jetés après la désinfection.
- Sélectionnez Graine de crevette saine. Observez le PL dans un bol en prélevant des échantillons à différents endroits dans le réservoir PL. Couper brièvement l'aération dans la cuve pendant le prélèvement d'échantillons. Les citernes ayant des morceaux morts ou présentant une coloration rougeâtre doivent être rejetées, Les réservoirs PL ayant une bonne survie indiquent une bonne santé du stock. Préférez le stade PL 15-16 (la longueur totale du corps doit être>12 mm). Les plus petites tailles peuvent ne pas être prêtes pour l'empoissonnement et peuvent ne pas survivre dans l'étang.
- Les graines de crevettes doivent être de taille uniforme et de couleur brun foncé ou brun clair. Graine de rouge, la couleur bleue ou verte doit être rejetée. Les graines de crevettes doivent être fortes et actives. Recueillez environ 500 PL du fond du réservoir, versez-le dans un bac rond. Remuez l'eau. Attendez 1 à 2 minutes. Si de nombreuses graines se concentrent au centre, ne sélectionnez pas ce lot de graines. Les graines de crevettes doivent passer un test de résistance à la salinité. Recueillir environ 100PL dans un verre avec de l'eau de cuve à salinité ambiante (28 à 32ppt), et versez une quantité égale d'eau fraîche. Attendez 30min. Si 100 % de la graine survit, puis sélectionnez le lot de semences. Les graines de crevettes doivent passer un test de résistance au formol. Recueillir environ 100 PL dans un verre contenant 100 ppm de formol (0,25 ml de formol commercial/L). Attendez 1h. Si plus de 9% la graine survit, puis sélectionnez le lot de semences. Sélectionnez le lot de semences qui réussit le test de résistance ci-dessus pour le test PCR. Testez également le PL pour la présence de résidus d'antibiotiques.
- Testez la graine pour la maladie et la santé. Les graines de crevettes peuvent contenir des agents pathogènes comme le WSSV. Les maladies virales peuvent entraîner une mortalité massive des crevettes dans les étangs. La graine malsaine entraînera une survie et une croissance médiocres dans les étangs. Recueillez et emballez environ 500 PL dans un sac de graines et envoyez-les à un laboratoire de diagnostic de crevettes qui a terminé avec succès le test en anneau pour le dépistage des maladies. Le résultat doit être négatif pour le MBV/HPV par montage humide et le WSSV par test PCR. Ne prenez que des lots dont le test est négatif à la fois pour le MBV et le WSSV.
Normes de laboratoire pour la sélection PL
Paramètre Standard Méthode WSSVAabsent2 step Nested PCRMBV/HPVAabsentWet mount/PCRSstress Test100 %50 % Chute de salinité pendant 30min>90%100ppm foramlin pendant 1hRapport muscle/intestin04:01MicroscopieHépatopancréasComplet avec globules d'huileMicroscopieGut complet et sans grégarinesSpinscopieMicroscopieNécroseFoulsabsentMicroscopieVariations microscopiques Physe Absente5 %Phase
- Pendant l'emballage et le transport des graines, ne mélangez pas les lots de graines provenant de différents réservoirs PL d'un couvoir ou de différents couvoirs. La salinité de l'eau du réservoir PL et de l'eau du bassin doit être la même et ne doit pas différer de plus de 2 ppt. Avant d'emballer la semence, ajuster la salinité de l'eau du réservoir PL à la salinité de l'eau du bassin. Commencez à ajuster la salinité dans l'écloserie au stade PL-5 et terminez le processus d'ajustement au moins un jour avant le conditionnement des graines. Les sacs de semences doivent contenir au moins 5 L d'eau et suffisamment d'oxygène (eau :oxygène =1 : 3). N'emballez pas plus de 1000 PL par sac. Ajoutez Artemia dans le sac de graines pour éviter le cannibalisme.
Les sacs de semences doivent être transportés dans des caisses à charbon thermique ou des bacs en plastique. Marquez les sacs/boîtes de semences des différents réservoirs larvaires. Le temps de transport de l'écloserie aux étangs doit être inférieur à 6 heures. Si le temps de transport est plus long, réduisez légèrement la température en plaçant des sacs de glace entre deux couches de polyéthylène du sac de semences. Transport pendant les heures fraîches (19h-7h).
- Les graines doivent être stockées dans l'étang pendant les heures fraîches de la journée, c'est-à-dire après 20h et avant 8h. Assurez-vous que la floraison du plancton est bonne et stable. Évitez de stocker si l'étang a de l'eau transparente ou de l'eau vert foncé. Laisser acclimater la graine ou la température à l'étang. Prenez le fond plat 500L désinfecté, réservoir rond et remplissez-le d'eau de bassin jusqu'à 50 %. Oxygéner l'eau à l'aide d'une bouteille d'oxygène. Ouvrez les sacs de graines et libérez les graines dans le réservoir. Traiter le PL avec du formol à 100 ppm pendant 15 minutes. Si une mue est observée ou si la période de transport des graines est supérieure à 6 heures, ne pas traiter au formol. Après le traitement, remuez l'eau pour créer un tourbillon. Tous les PL morts et faibles se concentrent en bas au centre du réservoir. Siphonnez le PL mort et faible à l'aide d'un tuyau flexible de 1 pouce. Ne lâchez pas les graines là où l'eau est trouble ou peu profonde. Conservez 100 PL dans deux petits hapas et vérifiez la survie après 48 heures. Si la survie moyenne est inférieure à 70 %, il faut peut-être prévoir un réapprovisionnement.
Source :NaCSA
